Последовательная разработка прямых методов исследования гортани, трахеи и бронхов началась с момента внедрения прямой ларингоскопии в 1884 г. Kirstein. На основании углубленных анатомических исследований Killian доказал, что бронхи менее ранимы при эндоскопии, чем мягкие стенки пищевода. Вместе со своими учениками Brunnings и Eicken Killian изобрел бронхоскопический прибор, который был в дальнейшем усовершенствован. Кроме того, ими была разработана техника и методика бронхоскопии (цит. по Еловой М.Я.). Первым бронхоскопическим вмешательством Киллиана было извлечение инородного тела (куска кости) в 1897 г. В 1904 г. Jackson написал первую монографию о трахеобронхоскопии, в которой он называет Killian отцом бронхоскопии. Термин «бронхоскопия» также предложил Killian. На основании литературных данных и собственных наблюдений автор подчеркивает роль бронхоскопии в извлечении инородных тел из трахеи и бронхов. В 1911 г. В.Д.Соколов на основании собственных наблюдений привел данные об успешном применении бронхоскопии при лечении абсцессов легкого. В 1924-1926 г.г. М.Ф.Цитович, В.К.Трутнев, А.Г.Лихачев и др. также опубликовали работы по применению бронхоскопии с лечебной целью при различных заболеваниях бронхов и легких (цит. по Еловой М.М.). Таким образом, бронхоскопия с самого начала своего существования стала важнейшим лечебно- оперативным эндоскопическим методом, и приоритет внедрения бронхоскопии в внутренних болезней принадлежит русским .
Как показал наш многолетний опыт, необходимо проводить лечебные бронхоскопии курсами. Еще в 1956 г. Soulas и Mounier-Kuhn разделили курс лечебной бронхоскопии на 3 этапа. Первый этап - пробное лечение, второй этап - лечение для закрепления, третий этап - лечение для поддержания.
Самым лучшим из антисептиков признана фурагина калиевая соль - один из наиболее распространенных препаратов нит- рофуранового ряда. Готовят 0,1% раствор фурагина калиевой соли.
Диоксидин - антисептик, производное хиноксолина, оказывает выраженное антибактериальное действие. Готовят 0,1% или 0,2% раствор диоксидина на 2% растворе гидрокарбоната натрия.
Санирующий раствор готовят непосредственно перед употреблением. Перед введением в бронхиальное дерево его обязательно подогревают до температуры 36-37°. На одну санацию используют от 60 до 140 мл й смеси.
Санационную бронхоскопию начинают с удаления содержимого из трахеобронхиального дерева с помощью отсоса. После этого промывают наиболее пораженные бронхи раствором антисептика. Одномоментно вводят не более 20 мл санирующей смеси с последующей аспирацией ее с помощью отсоса. Лечебную бронхоскопию заканчивают введением муколитика и/или .
Слизь, вырабатываемая бронхиальными клетками, содержит большое число сульфгидрильных групп, способных формировать связи друг с другом с образованием трехмерной мукоидной структуры. Эти связи, называемые «дисульфидными мостиками», очень прочны и могут быть разорваны только восстановителями.
В настоящее время при заболеваниях органов дыхания, сопровождающихся образованием вязкой мокроты слизисто-гнойного или гнойного характера, применяются бронхосекретолитические препараты.
Одним из эффективных препаратов этой группы является N-ацетилцистеин (флуимуцил) - это N-ацетиловое производное естественной аминокислоты L-ацетилцистеина.
Флуимуцил - это препарат, оказывающий прямое муколити- ческое действие; он воздействует на образование слизи путем разрыва дисульфидных мостиков макромолекул мукопротеина, присутствующих в бронхиальном секрете. Это фармакологическое действие связано с наличием в молекуле флуимуцила свободной сульфгидрильной группы, делающей его биологически активным препаратом. В результате воздействия флуимуцила образуются молекулы меньшего молекулярного веса, и происходит разжижение слизи, поскольку препарат уменьшает ее вязкость.
Воздействие флуимуцила на вязкость и эластичность слизи оценивалась in vitro на материале трахеобронхиального секрета животных, а также в исследованиях больных заболеваниями легких с применением различных методов. Эти исследования показали, что флуимуцил эффективно уменьшает вязкость и эластичность слизи, причем существует взаимосвязь
между дозой препарата и интервалом времени, предшествующим реакции. Постепенное повышение концентрации флуиму- цила приводит к более выраженному и быстрому уменьшению вязкости. Исследования с применением муциновых моделей выявили постепенное уменьшение вязкости и эластичности слизи при введении возрастающих концентраций флуимуцила.
Активность ресничек эпителия дыхательных путей зависит от степени вязкости секрета, покрывающего эпителий. Оптимальная вязкость в сочетании с адекватной подвижностью ресничек способствуют правильной и эффективной элиминации слизи. Исследования, проведенные на животных, показали, что флуи- муцил повышает мукоцилиарную активность. Это благоприятное воздействие на мукоцилиарный транспорт объясняется улучшением деятельности ресничек и приводит к более эффективной элиминации слизи и меньшей степени ее адгезии к эпителию.
Лечение флуимуцилом приводит к значительному снижению активности эластазы - как в бронхоальвеолярном секрете, так и в плазме крови - что свидетельствует о способности данного препарата предотвращ ать разрушение легочного эластина, обусловленное хроническим воспалительным процессом.
Передача окислительно-восстановительных сигналов - это часть основных механизмов воспаления, например, индукции цитокинов, пролиферации, апоптоза и генной регуляции с целью защиты клеток. Оксиданты действуют как медиаторы передачи сигналов. Было показано, что тиолосодержащие восстанавливающие агенты, в том числе флуимуцил, подавляют активацию МБкБ, контролирующего клеточные гены, ответственные за внутриклеточные адгезионные молекулы в интактных клетках. Кроме того, было показано, что флуимуцил подавляет экспрессию молекулы адгезии-1 клеток сосудов (УСЛМ-1) в эндотели- альных клетках человека.
Увеличивается количество данных, показывающих, что ок- сидативный стресс играет важную роль в развитии различных заболеваний человека. Источник стресса может быть внутренним (например, активированные клетки воспаления, клетки с окислительно-восстановительным циклом ксенобиотиков) или внешним (например, табакокурение).
Флуимуцил может оказывать прямой антиоксидантный эффект благодаря тому, что он является носителем свободной ти- ольной группы, способной взаимодействовать с электрофиль- ными группами свободных радикалов кислорода (реактивных кислородных частиц - РКЧ), Взаимодействие с РКЧ приводит к
промежуточному образованию тиольных радикалов; основным клеточным продуктом является дисульфид флуимуцила.
Флуимуцил оказывает непрямое антиоксидантное воздействие, связанное с тем, что он является предшественником глюта- тиона и защищает эпителий дыхательных путей от агрессивного воздействия токсичных веществ, предотвращая, таким образом, повреждения легочной ткани. . Этот трипептид является основным фактором защиты от внутренних токсических агентов (связанных, например, с аэробным дыханием клеток и обменом веществ в фагоцитах) и внешних агентов (например, окиси азота и других компонентов табачного дыма). Сульфгидрильная группа цистеина оказывает нейтрализующее воздействие на эти агенты.
Токсические агенты вызывают поражения любых тканей, однако эпителий бронхов и альвеол легких в связи с его расположением, анатомией и физиологией особенно склонен к возникновению поражений, вызываемых токсическими веществами. Существует ряд заболеваний (острый респираторный дистресс синдром, ХОБЛ, интерстициальные заболевания легких, муковисцидоз, бронхиальная астма), при которых на поверхности эпителия дыхательных путей присутствует избыток токсических агентов, приводящий к нарушению равновесия между глютатионом и токсическими агентами в сторону уменьшения количества глютатиона. В этих случаях развивается поражение эпителия дыхательных путей, называемое «оксидативным стрессом».
Глютатион синтезируется преимущественно в печени (выполняющей роль депо глютатиона) и в легких, однако он распределяется во всем организме. Синтез осуществляется в цитоплазме клетки в два отдельных ферментативных этапа. На первом этапе осуществляется соединение глютаминовой кислоты и цистеина под воздействием гамма-глютамилцистеин- синтетазы, а на втором этапе - добавление глицина к дипептиду гамма-глютамилцистеину под действием глютатионсинтетазы с образованием глютатиона. Флуимуцил выполняет роль предшественника глютатиона, поскольку он легко проникает в клетки и легко подвергается деацилированию с образованием цистеина.
Наличие аминокислот для использования в синтезе глютатиона является основным фактором регуляции синтеза глютатиона. Цистеин содержится в клетках в меньшем количестве по сравнению с глютаминовой кислотой и с глицином. Таким образом, синтез глютатиона зависит от наличия цистеина. Уровень глютатиона можно повысить путем дополнительного введения цистеина. Однако возможность введения активной формы цистеина - L-ацетилцистеина - отсутствует из-за низкого уровня всасывания в кишечнике, низкого уровня растворимости в воде и быстрого преобразования в процессе обмена веществ в печени. Эти недостатки преодолеваются при использовании флуимуци- ла, в котором радикал ацетил соединен с аминогруппой. Таким образом, появляется возможность вводить такое количество цистеина, которое нужно для поддержания адекватного уровня глютатиона в легких.
Во время лечебной бронхоскопии применяют 2 мл 5% раствора флуимуцила (N-ацетилцистеина), который вводят в конце санации. Действие препарата начинается через 30 мин и сохраняется до 2 - 4 ч. При этом происходит разжижение мокроты, она легче отходит и в большем количестве, чем до санации, поэтому создается впечатление о значительном увеличении объема мокроты. На самом деле флуимуцил не стимулирует выработку секрета, а лишь разжижает его. Флуимуцил обладает слабым запахом сероводорода, поэтому его нужно с осторожностью применять у больных бронхиальной астмой из-за опасности развития бронхоспазма, однако мы за более чем 5-ти летний опыт использования препарата не имели подобного осложнения.
Флуимуцил при инстилляциях не следует смешивать с антибиотиками, так как при этом происходит взаимная инактивация препаратов. Поэтому фирма Zambon выпустила уникальный препарат - флуимуцил антибиотик ИТ, который состоит из антибиотика тиамфеникола и N-ацетилцистеина, он остается среди антибиотиков первого выбора в лечении респираторных инфекций. Антибиотик вводят в конце санационной бронхоскопии в количестве 500 мг, разведя его предварительно в 5 мл воды для инъекций.
До последнего времени антибиотики инсталлировали в просвет бронхиального дерева в конце лечебной бронхоскопии, на фоне выраженного кашля, который провоцировался введением санирующего вещества, поэтому антибиотики в большем количестве откашливались пациентом, и роль их была невелика. В связи с этим нами разработан и широко внедрен в клиническую практику способ интрабронхиальной регионарной антибиоти- котерапии.
Статью подготовил и отредактировал: врач-хирургСтраница 100 из 126
3.3. ЛЕЧЕБНАЯ ЭНДОСКОПИЯ
Лечебное значение эндоскопических методов несколько уступает их роли в диагностике заболеваний органов грудной клетки. Тем не менее в настоящее время комплексная терапия большинства воспалительных и обструктивных болезней дыхательной системы вряд ли может считаться полноценной без применения того или иного эндоскопического вмешательства. Больные с острыми и хроническими нагноениями легких, которым показано оперативное лечение, нередко нуждаются в длительной предоперационной подготовке, которую проводят путем эндоскопической санации гнойных очагов. При развитии осложнений в послеоперационном периоде часто возникают показания к проведению лечебной эндоскопии. В некоторых случаях эндоскопическое лечение играет основную роль и является единственным эффективным способом лечения больных. Наиболее часто с этой целью используют бронхоскопию, реже - торакоскопию в ее современных вариантах.
САНАЦИЯ БРОНХОВ ПРИ ХРОНИЧЕСКОМ БРОНХИТЕ
Значение лечебных бронхоскопий становится очевидным, если учесть ту роль, которую играет воспаление бронхов в развитии большинства хронических воспалительных заболеваний легких. Многолетние исследования И.Е. Есиповой (1976), Г.И. Непомнящих (1978), Т. Ноуусп (1951), Б. Ясин (1963), Н. Оз показали, что так или иначе, первично или вторично, бронхиальная система вовлекается в патологический процесс при всех видах бронхолегочного воспаления. При этом, прежде всего, страдает эвакуаторная, очистительная функция бронхов, а с увеличением содержимого в дыхательных путях нарушаются вентиляция и газообмен. В связи с этим очевидна необходимость проведения мероприятий, направленных на поддержание и восстановление бронхиальной проходимости, а также механизма самоочищения бронхов. Естественно, что эти мероприятия нельзя свести только к проведению бронхоскопии. К ней целесообразно прибегать лишь в тех ситуациях, когда консервативная терапия, общие принципы которой при заболеваниях бронхолегочной системы описаны Б.Е. Вотчалом (1965), Д. М. Злыдниковым (1969), В. И. Стручковым с соавт. (1973). Н.В. Путовым и Г.Б. Федосеевым (1978), оказывается малоэффективной, т.е. на той стадии, когда продукция слизи превышает эвакуаторные возможности дыхательных путей и развивается обтурация бронхов, а затем и нагноение в них.
Лечебный эффект бронхоскопии при хроническом воспалении бронхиальной системы зависит от двух основных моментов: аспирации бронхиального содержимого и введения лекарственных веществ, оказывающих непосредственное влияние на микрофлору бронхов и разжижающих мокроту для облегчения ее самопроизвольного удаления. При развитии грануляций и изъязвлений слизистой оболочки в доступных для бронхоскопических инструментов отделах бронхиального дерева целесообразна их непосредственная обработка. Однако подобные изменения чаще встречаются при туберкулезе дыхательных путей, поэтому частота применения механического воздействия в бронхах при их неспецифическом воспалении относительно невысока.
Следует отметить, что так же, как и в диагностике заболеваний легких, правда, в несколько меньшей степени, прогресс бронхоскопических методов лечения в настоящее время обусловлен созданием бронхофиброскопа, превратившего лечебную бронхоскопию под местной анестезией в сравнительно безопасную процедуру, которая легко переносится больными. В настоящее время применяют различные методы и схемы «бронхоскопотерапии». Приведем некоторые из них.
Санационные бронхофиброскопии и внутрибронхиальные инсталляции под местной анестезией.
Манипуляции выполняют преимущественно трансназальным способом, при котором больной может свободно откашливаться, сплевывая мокроту и вводимые в бронхи лекарственные растворы. После анестезии слизистой оболочки бронхиального дерева и ее осмотра содержимое бронхов удаляют через просвет бронхофиброскопа с помощью вакуум-отсоса, подводя дистальный конец гибкого тубуса непосредственно к скоплениям мокроты. Для облегчения аспирации через биопсийный канал в просвет бронхов предварительно вводят 10 мл теплого 1 % раствора калийной соли фурагина (фурагин, растворенный с хлоридом натрия) с добавлением к нему 1-3 мл раствора муколитики (цистеин, мистаброн, мукосольвин).
При диффузном двустороннем бронхите с обильной гиперсекрецией производят повторные инстилляции названных выше препаратов, вводя их через катетер в устье каждого долевого бронха, а затем аспирируя бронхиальное содержимое под контролем зрения. В момент введения жидкости больного просят задержать дыхание, а во время се аспирации - откашляться. Во время одной из бронхофиброскопии в зависимости от степени и распространенности эндобронхита бронхи промывают 20-80 мл жидкости. Перед извлечением бронхофиброскопа в просвет бронхов инсталлируют протеолитические ферменты, муколитики и антибиотики (с учетом характера эндобронхита и чувствительности микрофлоры). При наличии гнойной мокроты с ихорозным запахом применяют инстилляции 5-10 мл 0,5-I % раствора диоксидина. У больных с бронхоспастическим компонентом к внутрибронхиально вводимым растворам добавляют 10 мл 2,4% раствора эуфиллина. После процедуры больного укладывают на 5-7 мин попеременно на правый и левый бок, а затем просят его активно откашляться. Курс лечения состоит из 5-20 бронхофиброскопии в зависимости от характера патологии и эффекта проводимой терапии. Процедуры повторяют через день, а при хорошей переносимости - ежедневно, в том числе и амбулаторно.
Санационные бронхоскопии под наркозом.
Процедуру выполняют с помощью жесткого бронхоскопа по общепринятой методике. Начинают с удаления содержимого из видимых отделов бронхов с помощью жесткого аспиратора, после чего наиболее пораженные отделы бронхиального дерева промывают 1 % раствором фурагина К, производя повторные инстилляции его по 10-15 мл с последующей аспирацией. Общее количество вводимой жидкости колеблется от 40 до 80-100 мл в зависимости от выраженности эндобронхита и количества мокроты. По показаниям, так же как и во время лечебных бронхофиброскопии, в бронхи вводят антибиотики, диоксидин, муколитики, протеолитические ферменты. Процедуры повторяют с интервалом в 2-3 дня. Длительность курсового лечения определяется количеством бронхоскопий, необходимых для купирования воспалительного процесса - от 3-4 до 11-12.
Комбинированная санационная терапия.
Производят лечебные бронхоскопии под наркозом и бронхоскопии, которые выполняют под местной анестезией в промежутках между ними. В начале курса лечения эндо- бронхиальные процедуры проводят ежедневно, а после улучшения состояния больных и стихания явлений эндобронхита - с увеличивающимися интервалами. В среднем на две-три бронхоскопии, выполняемые под наркозом, приходится пять-восемь бронхофиброскопии. При отсутствии бронхофиброскопа санационные бронхоскопии, которые производят под наркозом, можно с успехом сочетать с внутрибронхиальными инсталляциями лекарственных растворов с помощью гортанного шприца [Молодцова В.П., 1978].
Сравнительное изучение эффективности различных видов бронхоскопической терапии у 179 больных с хроническим бронхитом показало, что курсовое лечение с помощью жесткого бронхоскопа под наркозом при негнойных формах заболевания дает положительные результаты в 86,6% случаев, лечебные бронхофиброскопии под местной анестезией и комбинированная терапия столь же эффективны - соответственно 78,4 % и 85,7 %. При гнойных формах хронического бронхита ригидные бронхоскопии приводят к успеху в 73,3% случаев, бронхофиброскопии- в 86,7%, а их комбинация - в 94,4 %.
Применение бронхофиброскопии дня лечения хронического бронхита позволило интенсифицировать бронхоскопическую санацию, изменив схемы лечения. По всей вероятности, периодичность проведения санационных бронхоскопий с промежутками в 2-3 дня и более, рекомендованная ранее, объявляется не столько истинной потребностью в таком эпизодическом удалении содержимого бронхов и тем более введении антибактериальных препаратов, сколько возможностями больных, не выдерживающих более частого повторения «жесткой» бронхоскопии.
Ежедневное внутрибронхиальное введение антибиотиков и муколитиков в виде аэрозолей в перерывах между бронхоскопиями в некоторой мере возмещает этот недостаток. Однако аэрозоли, даже ультразвуковые, как показывают исследования В.П. Молодцовой (1978), малоэффективны при гнойных бронхитах с выраженной бронхиальной секрецией.
Эффект лечения значительно увеличивается при сочетании бронхоскопий и ежедневных внутрибронхиальных инсталляций лекарственных растворов и в еще большей степени при использовании бронхофиброскопии. Бронхофиброскопия, для проведения которой требуется местное обезболивание и которая мало чем отличается по своему обременяющему воздействию на больного от внутрибронхиальной инстилляции с помощью гортанного шприца или трансназального катетера, обладает более широкими возможностями, так как позволяет не только направленно вводить лекарственные препараты, но и производить тщательный, визуально контролируемый туалет бронхиального дерева. Преимущества выполнения санационных бронхофиброскопии под местной анестезией заключаются также в том. что возможно активное откашливание больного в момент аспирации содержимого бронхов, в результате чего мокрота удаляется из более глубоких отделов бронхиального дерева. Наконец, бронхофиброскопия под местной анестезией позволяет проводить курсы лечебных бронхофиброскопии амбулаторно или закапчивать в поликлинике начатое в стационаре лечение со значительно меньшим риском, чем при использовании общей анестезии.
Среди всех эндоскопических методов исследования бронхоскопия давно занимает особое место, являясь не только одним из первых диагностических методов, но и важнейшим и эффективным способом лечения больных хроническими воспалительными и нагноительными заболеваниями легких. Последовательная разработка прямых методов исследования гортани, трахеи и бронхов началась с момента внедрения прямой ларингоскопии в 1884 г. Kirstein. На основании углубленных анатомических исследований Killian доказал, что бронхи, имеющие плотный хрящевой скелет, менее ранимы при эндоскопии, чем мягкие стенки пищевода. Вместе со своими учениками Brunnings и Eicken Killian изобрел упрощенный бронхоскопический прибор, который был в дальнейшем значительно усовершенствован. Кроме того, ими была детально разработана техника и методика бронхоскопии (цит. по Еловой М. Я.). Первым бронхоскопическим вмешательством Киллиана было извлечение инородного тела (куска кости) в 1897 г. В 1904 г. Jackson написал первую монографию о трахеобронхоскопии, в которой он называет Killian отцом бронхоскопии. Термин «бронхоскопия» также предложил Killian. На основании обобщения литературных данных и собственных наблюдений автор подчеркивает роль бронхоскопии в распознавании и извлечении инородных тел из трахеи и бронхов. В 1911 г. В. Д. Соколов на основании собственных наблюдений привел данные об успешном применении бронхоскопии при лечении больных абсцессом легкого.
В 1924-1926 г. г. М. Ф. Цитович, В. К. Трутнев, А. Г. Лихачев и др. также опубликовали работы по применению бронхоскопии с лечебной целью при различных заболеваниях бронхов и легких (цит. по Еловой М. М.). Таким образом, приоритет внедрения бронхоскопии в клинику внутренних болезней принадлежит русским врачам.
Как показал многолетний опыт применения эндоскопии в пульмонологии - единичные курсы лечебных бронхоскопий эффективны при пневмонии, абсцедирующей пневмонии или абсцессе легкого, а при обструктивной болезни легких необходимо проводить лечебные бронхоскопии курсами. Еще в 1956 г. Soulas и Mounier-Kuhn разделили курс лечебной бронхоскопии на 3 этапа. Первый этап - пробное лечение, второй этап - лечение для закрепления, третий этап - лечение для поддержания.
Основными лекарственными веществами, которые используют во время лечебных бронхоскопий, являются антисептики, антибиотики, муколитики и иммуномодуляторы.
Самым лучшим из антисептиков была признана фурагина калиевая соль - один из наиболее распространенных препаратов нитрофуранового ряда. Готовят 0, 1% раствор фурагина калиевой соли на изотоническом растворе хлорида натрия. Диоксидин - антисептик, производное хиноксолина, оказывает выраженное антибактериальное действие. Готовят 0, 1% или 0, 2% раствор диоксидина на 2% растворе гидрокарбоната натрия. Санирующий раствор готовят непосредственно перед употреблением. Перед введением в бронхиальное дерево его обязательно подогревают до температуры 36-37°. На одну санацию расходуют от 60 до 140 мл санирующей смеси.
Санационную бронхоскопию начинают с удаления содержимого из трахеобронхиального дерева с помощью отсоса. После этого промывают наиболее пораженные бронхи раствором антисептика. Одномоментно вводят не более 20 мл санирующей смеси с последующей аспирацией ее с помощью отсоса. Лечебную бронхоскопию заканчивают введением муколитика и/или антибиотика.
Слизь, вырабатываемая бронхиальными клетками, состоит из гликопротеидов, сульфомуцинов и воды; она содержит большое количество сульфгидрильных групп, способных формировать связи друг с другом с образованием трехмерной мукоидной структуры. Эти связи, называемые «дисульфидными мостиками», очень прочны и могут быть разорваны только восстановителями.
При патологических состояниях формируется повышенное количество дисульфидных мостиков, что приводит к увеличению вязкости и эластичности бронхиального секрета и повышает риск развития инфекции в скоплениях секрета. Впоследствии образуется гнойная мокрота.
В числе первых лекарственных средств, влияющих на реологические свойства бронхиального секрета, применяли ферментные препараты - трипсин, химотрипсин, рибонуклеазу, дезоксирибонуклеазу. Препараты вводили в виде ингаляций или эндобронхиальных инсталляций. Обычно значительное разжижение мокроты и улучшение ее отхождения наблюдалось к 5 - 7-му дню лечения, курс составлял 10-15 дней. В настоящее время применение протеолитических ферментов, особенно в лечении
больных хронической обструктивной болезнью легких, представляется нецелесообразным вследствие возможного развития бронхоспазма вплоть до астматического статуса, увеличения склонности к кровохарканью, аллергическим реакциям и усилению деструкции межальвеолярных перегородок при дефиците альфа 1-антитрипсина.
В настоящее время при заболеваниях органов дыхания, сопровождающихся образованием очень вязкой, трудно отделяемой мокроты слизисто-гнойного или гнойного характера, применяются лекарственные средства, известные как муколитики или бронхосекретолитические препараты.
Одним из наиболее эффективных препаратов этой группы является N-ацетилцистеин (флуимуцил) - это N-ацетиловое производное естественной аминокислоты L-ацетилцистеина. Флуимуцил - это препарат, оказывающий прямое муколитическое действие; он воздействует на образование слизи путем разрыва дисульфидных мостиков макромолекул мукопротеина, присутствующих в бронхиальном секрете. Это фармакологическое действие связано с наличием в молекуле флуимуцила свободной сульфгидрильной группы, делающей его биологически активным препаратом. В результате воздействия флуимуцила образуются молекулы меньшего молекулярного веса, и происходит разжижение слизи, поскольку препарат уменьшает ее вязкость. Воздействие флуимуцила на вязкость и эластичность слизи оценивалась in vitro на материале трахеобронхиального секрета животных, а также в исследованиях больных различными заболеваниями легких с применением различных методов. Эти исследования показали, что флуимуцил эффективно уменьшает вязкость и эластичность слизи, причем существует взаимосвязь между дозой препарата и интервалом времени, предшествующим реакции. Постепенное повышение концентрации флуимуцила приводит к более выраженному и быстрому уменьшению вязкости. Исследования с применением муциновых моделей выявили постепенное уменьшение вязкости и эластичности слизи при введении возрастающих концентраций флуимуцила. Активность ресничек эпителия дыхательных путей зависит от степени вязкости секрета, покрывающего эпителий. Оптимальная вязкость в сочетании с адекватной подвижностью ресничек способствуют правильной и эффективной элиминации слизи.
Исследования, проведенные на животных, показали, что флуимуцил повышает мукоцилиарную активность. Это благоприятное воздействие на мукоцилиарный транспорт объясняется улучшением деятельности ресничек и приводит к более эффективной элиминации слизи и меньшей степени ее адгезии к эпителию.
Лечение флуимуцилом приводит к значительному снижению активности эластазы - как в бронхоальвеолярном секрете, так и в плазме крови - что свидетельствует о способности данного препарата предотвращать разрушение легочного эластина, обусловленное хроническим воспалительным процессом.
Передача окислительно-восстановительных сигналов - это часть основных механизмов воспаления, например, индукции цитокинов, пролиферации, апоптоза и генной регуляции с целью защиты клеток. Оксиданты действуют как медиаторы передачи сигналов. Было показано, что тиолосодержащие восстанавливающие агенты, в том числе флуимуцил, подавляют активацию NFkB, контролирующего клеточные гены, ответственные за внутриклеточные адгезионные молекулы в интактных клетках. Кроме того, было показано, что флуимуцил подавляет экспрессию молекулы адгезии-1 клеток сосудов (VCAM-1) в эндотелиальных клетках человека.
Увеличивается количество данных, показывающих, что оксидативный стресс играет важную роль в развитии различных заболеваний человека. Источник стресса может быть внутренним (например, активированные клетки воспаления, клетки с окислительно-восстановительным циклом ксенобиотиков) или внешним (например, табакокурение).
Флуимуцил может оказывать прямой антиоксидантный эффект благодаря тому, что он является носителем свободной тиольной группы, способной взаимодействовать с электрофильными группами свободных радикалов кислорода (реактивных кислородных частиц - РКЧ), Взаимодействие с РКЧ приводит к промежуточному образованию тиольных радикалов; основным клеточным продуктом является дисульфид флуимуцила. Флуимуцил оказывает непрямое антиоксидантное воздействие, связанное с тем, что он является предшественником глютатиона и защищает эпителий дыхательных путей от агрессивного воздействия токсичных веществ, предотвращая, таким образом, повреждения легочной ткани. Глютатион - это трипептид, состоящий из глютаминовой кислоты, цистеина и глицина. Этот трипептид является основным фактором защиты от воздействия внутренних токсических агентов (связанных, например, с аэробным дыханием клеток и обменом веществ в фагоцитах) и внешних агентов (например, окиси азота, окиси серы и других компонентов табачного дыма, а также веществ, загрязняющих воздух). Сульфгидрильная группа цистеина оказывает нейтрализующее воздействие на эти агенты. Токсические агенты вызывают поражения любых тканей, однако эпителий бронхов и альвеол легких в связи с его расположением, анатомией и физиологией особенно склонен к возникновению поражений, вызываемых токсическими веществами.
Существует ряд заболеваний (острый респираторный дистресс-синдром, ХОБЛ, рак легкого, интерстициальные заболевания легких, муковисцидоз, бронхиальная астма), при которых на поверхности эпителия дыхательных путей присутствует избыток токсических агентов, приводящий к нарушению равновесия между глютатионом и токсическими агентами в сторону уменьшения количества глютатиона. В этих случаях развивается поражение эпителия дыхательных путей, называемое «оксидативным стрессом». Считается, что оксидативный стресс играет важную роль в патогенезе различных заболеваний легких. Нарушение равновесия между оксидантами и антиоксидантами обусловлено повышенным количеством оксидантов и/или недостаточностью антиоксидантной системы. РКЧ присутствуют в легких в норме и играют важнейшую роль в их функционировании. Кроме того, в легких имеется развитая система внутри- и внеклеточных антиоксидантов. Глютатион синтезируется преимущественно в печени (выполняющей роль депо глютатиона) и в легких, однако он распределяется во всем организме. Синтез осуществляется в цитоплазме клетки в два отдельных ферментативных этапа. На первом этапе осуществляется соединение глютаминовой кислоты и цистеина под воздействием гамма-глютамилцистеинсинтетазы, а на втором этапе - добавление глицина к дипептиду гамма-глютамилцистеину под действием глютатионсинтетазы с образованием глютатиона. Флуимуцил выполняет роль предшественника глютатиона, поскольку он легко проникает в клетки и легко подвергается деацилированию с образованием цистеина. Наличие аминокислот для использования в синтезе глютатиона является основным фактором регуляции синтеза глютатиона. Цистеин содержится в клетках в меньшем количестве по сравнению с глютаминовой кислотой и с глицином. Таким образом, синтез глютатиона зависит от наличия цистеина. Уровень глютатиона можно повысить путем дополнительного введения цистеина. Однако возможность введения активной формы цистеина - L-ацетилцистеина - отсутствует из-за низкого уровня всасывания в кишечнике, низкого уровня растворимости в воде и быстрого преобразования в процессе обмена веществ в печени.
Эти недостатки преодолеваются при использовании флуимуцила, в котором радикал ацетил соединен с аминогруппой. Таким образом, появляется возможность вводить такое количество цистеина, которое необходимо для поддержания адекватного уровня глютатиона в легких.
Во время лечебной бронхоскопии применяют 2 мл 5% раствора флуимуцила (N-ацетилцистеина), который вводят в бронхиальное дерево в конце санации. Действие препарата начинается через 30 мин после введения и сохраняется до 2 - 4 ч. При этом происходит разжижение мокроты, она легче отходит и в большем количестве, чем до санации, поэтому создается впечатление о значительном увеличении объема мокроты. На самом деле флуимуцил не стимулирует выработку секрета, а лишь разжижает его. Флуимуцил обладает слабым запахом сероводорода, поэтому его нужно с осторожностью применять у больных бронхиальной астмой из-за опасности развития бронхоспазма, однако, за более чем 5-ти летний опыт использования препарата не отмечалось подобного осложнения. Флуимуцил при инстилляциях не следует смешивать с антибиотиками, так как при этом происходит взаимная инактивация препаратов. Поэтому, например одна из фирм (фирма Zambon) выпустила уникальный препарат - флуимуцил антибиотик ИТ, который состоит из антибиотика тиамфеникола и N-ацетилцистеина. Препарат обладает широким спектром антибактериальной активности. Он активен в отношении многих штаммов устойчивых к беталактамным антибиотикам, в отношении внутриклеточных возбудителей (Legionella, Chlamidia, micoplasma), а также в отношении штаммов Staphylococcus aureus VISA и многих устойчивых штаммов S. Aureus. Еще одним преимуществом антибиотика является его высокая биологическая доступность и высокий коэффициент проникновения в легочную ткань. Другой важной особенностью является то, что он единственный антибиотик в классе хлорамфениколов, не имеющий гематологической токсичности. Таким образом, флуимуцил антибиотик ИТ остается среди антибиотиков первого выбора в терапии респираторных инфекций. Антибиотик вводят в конце санационной бронхоскопии в количестве 500 мг, разведя его предварительно в 5 мл воды для инъекций.
Отсюда следует, что бронхоскопия с самого начала своего существования стала важнейшим лечебно-оперативным эндоскопическим методом у больных с заболеваниями бронхо-легочной системы.
Санацию трахеобронхиального дерева проводят следующими методами:
1. пасторальный дренаж
2. перкуссионным, вибрационным и вакуумным массажем
3. увеличением внутрилегочного давления, усиливающим коллатеральную вентиляцию
4. стимуляция и имитация кашля
5. аспирирование мокроты
Указанные методы наиболее эффективны при одновременном использовании мер, направленных на улучшение реологических свойств и дренирования мокроты.
Пасторальный дренаж. Используют для эвакуации мокроты из различных легочных зон при нарушении механизмов естественного дренирования мокроты (пневмония, бронхоэктазы, бронхорея, легочные кровотечения). Позиции могут быть разнообразны, важно учитывать это, для нахождения пациента в неудобном положении может привести к нарушениям дыхания и кровообращения.
Перкуссионный массаж. Выполняют ладонями рук в форме чашечки наложенными плашмя на грудную клетку. Поколачивание проводят с частотой 40-60 раз в минуту в течение 1-2 минут. Проводят 2-3 серии, затем просят пациента откашляться, пауза 1-2 минуты для отдыха. После чего цикл повторяют. В зависимости от состояния пациента и переносимости манипуляции ее длительность составляет от 10 до 20 минут.
Вибрационный массаж. Выполняют вибрирующими или встряхивающими движениями кистей или с помощью специальных вибромассажеров, имеющих площадку, вибрирующую с высокой частотой при регулируемой амплитуде сотрясания.
ВИВЛ и ИВЛ. При повышении давления на вдохе до 20-30 си вод ст вентиляция способствует улучшению коллатеральной вентиляции, улучшению дренирования дыхательных путей.
Стимуляция и имитация кашля. Проводят кратковременное надавливание на перстневидный хрящ, затем глубокий вдох и максимальный выдох, резкое сжатие нижних отделов грудной клетки с двух сторон. Также применяют аэрозоли, чрезкожную катетеризацию трахеи, раздражение катетером носовых ходов или носоглотки.
Аспирирование мокроты. Применяют как заключительный этап перечисленных выше манипуляций, как и самостоятельно.
При некоторых видах ОДН эффективным способом является лаваж (промывание дыхательных путей).
Чрезкожная катетеризация трахеи и бронхов. Позволяет вводить в трахеобронхиальное дерево в течении длительного времени постоянно и фракционно лекарственные препараты для стимуляции кашля, для улучшения реологических свойств мокроты, лечения абструктивных воспалительных гнойных процессов, для восстановлении деятельности сердца (вместо внутрисердечного введения препаратов), также проводить инжекторную ИВЛ.
Для выполнения чрезкожной катетеризации трахеи и бронхов необходимы:
§ специальные или серийные инъекционные иглы диаметром от 1,5-3 мм
§ катетеры диаметром от 1-1,4 мм
§ раствор новокаина 0,5 и 0,25%
§ стерильный материал
1. пациента укладывают на спину с валиками под плечами
2. после обработки кожи операционное поле изолируют стерильным материалом
3. осуществляют анестезию в месте пункции
4. пункцию передней стенки трахеи производят по средней линии на уровне между перстневидным хрящом и первым кольцом трахеи, либо на уровне 1 и 2-ого колец трахеи
5. для предотвращения ранения задней стенки трахеи и передней стенки пищевода указательный палец устанавливают на расстояние 0,5-1 см от конца иглы
6. о продвижении иглы в трахею судят по эффекту проваливания и поступлению в шприц воздуха
7. при введении через иглу жидкости появляется кашель.
Указанные признаки свидетельствуют о правильном расположении иглы и катетера в трахеи и бронхах. Катетер небольшого размера можно ввести через иглу.
Транстрахеальный катетер позволяет проводить кислородотерапию, инжекторную ИВЛ при гиповентиляции, бронхиальной астме, отеке легкого, а так же создавать оптимальные условия для газообмена при затрудненной интубации. Одновременное введение через катетер антибиотиков и других противомикробных препаратов повышается эффективность лечения пневмоний и абсцессов.
Мониторинг.
Мониторинг (контроль за состоянием пациента). Если мониторинг во время операции то – интраоперационный, перед – предоперационный, послеоперационный.
Цели мониторинга:
1. осуществить контроль за функциями организма
2. осуществить контроль за лечебными действиями
3. осуществить контроль за окружающей средой (температурой воздуха в операционной, температурой операционного стола, содержанием CO 2 в операционной, концентрацией газонаркотической смеси)
Мониторирование – бдительное постоянное наблюдение за пациентом через каждые 5 минут.
Выделяют мониторинг: визуальный, инструментальный, лабораторный и комбинированный. При этом все виды могут быть, кроме визуального, инвазивными (проникать в органы, ткани, сосуды) и неинвазивными (которые не внедряются в организм) – ЭКГ, пульсоксиметр, измерение АД. Контроль за состоянием пациента осуществляется по следующим параметрам:
1. внешний вид пациента: цвет, температура, влажность кожи (потливость, гиперемия свидетельствуют о гиперкапнии, синюшность – о гипоксии, мраморная и холодная кожа бывает при спазме периферических сосудов)
2. размер и форма зрачков, их расширение свидетельствует о боли, гипоксии; анизокория – НМК.
3. показания манометра, водного замка (+ промокание повязок, дренажи – в палате реанимации)
4. состояние сердечно-сосудистой системы: АД (систолическое, диастолическое, пульсовое и средне-динамическое), пульс, ЦВД. Систолическое давление – состояние миокарда левого желудочка. Диастолическое давление – характеризуется степенью тонуса артериальных стенок. Пульсовое давление – СД – ДД. Средне-динамическое давление – ДД + 1/3 ПД. АД – это давление крови на стенки артерий. Венозное давление (в фазе диастолы): ЦВД и периферическое ВД.
ЭКГ – запись биотоков с сердечной мышцы. V 1 -V 6 – если один электрод, то запись униполярная или одноканальная.
I, II, III, IIIвд – стандартные отведения.
avR, avL, avF – усиленные отведения с конечностей.
V 1 – V 6 – грудные отведения.
A(антерио), J(интерио), D(дорсалис) – специальные отведения по Небу.
Определение состояния коронарного кровотока. Стандартные отведения показывают суммарные показатели со всех отделов сердца (ЛП, ЛЖ, ЛП, ЛЖ, коронарный кровоток, время проведения импульсов, частоту, ритм, силу сердечных сокращений). По кардиомониторам регистрируется II отведение.
Усиленные отведения повторяют стандартные.
Грудные отведения показывают топику состояния мышцы сердца:
§ V 1 – правые отделы сердца
§ V 2 - перегородка
§ V 3 – верхушка (ЛЖ)
§ V 4 -V 6 – передняя стенка ЛЖ
§ II, III, avF – задняя стенка
§ D – специальное отведение со спины.
Активный электрод накладывается на поверхность грудной клетки. Униполярные отведения:
V 1 – 4-ое межреберье по окологрудинной линии слева
V 2 - 4-ое межреберье по окологрудинной линии справа
V 3 – среднее положение между V 1 и V 2
V 4 – 5-ое межреберье по среднеключичной линии
V 5 - 5-ое межреберье по переднеподмышечной линии
V 6 - 5-ое межреберье по среднеподмышечной линии
Для исключения дыхательной аритмии снимают отведение IIIвд.
5. состояние системы дыхания. Виды дыхания: спонтанное и аппаратное. При спонтанном дыхании отмечают частоту, равномерность (по площади всех легких: верхушка или нижние, задненижние отделы вентилируются хуже), глубина, минутную вентиляцию легких. При ИВЛ – это МОД, ДО, давление на вдохе и на выдохе. Об адекватном дыхании судят по клиническим признакам и газовому составу крови.
6. состояние ЦНС. На основании описанных выше клинических данных и специального метода ЭЭГ.
7. функция почек. Почасовой диурез. За 1 минуту – 1 мл мочи. Олигурия (менее 40 мл) и анурия (менее 20 мл за час) в наркозе могут развиться в результате неадекватного обезболивания, гиповолемии и причин, связанных с особенностями операции.
8. Температура тела. Кроме температуры кожи при больших операциях на грудной, брюшной полости, при гипотермии, искусственном кровообращении, у детей измеряют температуру в пищеводе, а чаще а прямой кишке. Понижение температуры тела может быть в результате охлаждения в операционной, если температура ниже 20 0 С, при большой кровопотере, остановке сердца, плохой анестезии. Величина кровопотери может быть рассчитана по ОЦК или путем измерения и взвешивания.
9. Лабораторные данные, объем которых зависти от тяжести пациента, операции, особенности анестезии и возможностей ЛУ. Обычно определяют гематокрит (Ht), гемоглобин (Hb), данные КОС, сахар крови и мочи, время свертывания, время кровотечения, электролиты плазмы и крови, коагулограмму по показаниям.
В настоящее время все больше используется мониторное наблюдение. Монитор – это прибор, который имеет регистраторы (датчики), анализаторы и сигнализаторы. Выделяют четыре поколения мониторов:
1-ое поколение: регистрируют: ЭКГ, пульс, ЧД.
2-ое поколение: регистрируют: ЭКГ,АД, пульсовое давление, ЦВД, температуру, пульс, ЧД и делают возможным запись параметров.
3-ое поколение: регистрируют то же что и 2-ое поколение, но имеют сигнал тревоги.
1-ое поколение: не только регистрируют, записывают, но и делают заборы крови для анализов и по полученным результатам изменять самостоятельно лечение. Такой монитор требует блок памяти (компьютер).
В 1986 году анестезиологическим отделением медицинского факультета Гарвардского университета г. Бостона был опубликован и принят стандарт мониторинга. Согласно стандарта его выполнение должно снизить осложнения и смертность пациентов с минимальной степенью операционного риска, а также частоту и тяжесть побочных явлений в наркозе и нахождение пациентов в реанимации. Требования стандарта:
§ Измерение и регистрация всех параметров через каждые пять минут
§ Постоянное присутствие медицинской сестры и врача.
При проведении анестезии обязателен контроль за дыханием и вентиляцией (экскурсия грудной клетки, наполнение дыхательного мешка, цвет кожных покровов, концентрация углекислоты на капнометре); следить за давлением в системе «аппарат-больной», газами крови. Обязательный контроль газопотока на дозиметре, особое внимание за потоком кислорода.
Согласно этому стандарту должен быть измеритель концентрации кислорода во вдыхаемой смеси и при ее снижении – сигнал.
Мониторинг за кровообращением: через 5 минут АД, ЦВД, ЭКГ (постоянно), пульсоксиметрия, измерение давления в полостях сердца с помощью катетера Сванс-Ганса.
Несмотря на высокий современный технический уровень мониторов, человеческий фактор занимает ведущую роль в профилактике осложнений.
| Наш стандарт принят в 1998 году. |
Требования, предъявляемые к медицинским сестрам анестезистам при оценке функционального состояния:
Соблюдать этико-деонтологические принципы при общении с пациентами
Владеть методикой определения пульса, АД, ЦВД
Знать основные типы дыхания и уметь распознать патологические состояния, связанные с нарушением дыхания
Перед манипуляцией начинать оценку функционального состояния: обычно определить тяжесть состояния, а затем переходить к манипуляции
Вести контроль за состоянием пациента после выполненной манипуляции и докладывать врачу-анестезиологу изменениях состояния пациента.
Пути проникновения бактерий:
1. микроаспирация ротоглоточного секрета;
2. аспирация содержимого пищевода/желудка;
3. ингаляция инфицированного аэрозоля;
4. гематогенным путем из отдаленного инфицированного участка;
5. экзогенное проникновение из инфицированного участка (например, плевральной полости); прямое заражение дыхательных путей у интубированных больных от персонала палат интенсивной терапии . Особо следует обратить внимание на последний пункт вышесказанного, т.к. именно при несоблюдении правил санации трахеобронхиального дерева происходит заражение дыхательных путей патогенной микрофлорой.
При санации ТБД обязательно соблюдение следующих правил:
1. пользоваться только стерильными катетерами и наконечниками с гладкими краями;
2. надевать перчатки и использовать пинцет, чтобы удерживать проксимальный конец катетера подведенный к месту отсасывания; диаметр катетера не должен быть больше половины просвета трахеостомической или интубационной трубки; отсасывание не должно продолжаться более 15с;
3. перед санацией увеличивают концентрацию кислорода во вдыхаемой смеси.
Цель : поддержание нормального дыхания через трахеостому, санация трахеобронхиального дерева
Показания: наличие интубационной трубки, трахеостомы.
Оснащение: стерильные: маска, медицинские перчатки, катетеры, марлевые салфетки, салфетки штанишки, ватные тампоны, зонд с нарезкой, внутренняя трахеостомическая трубка, пипетки соответствующего размера, лоток, пинцет; 0.82%-ный раствор фурацилина, 70%-ный спирт, 2%-ный раствор гидрокарбоната натрия (пищевая сода), паста Лассара, теплая теплая кипяченая вода, электроотсос, лоток для отработанного материала, емкость с дезинфицирующим раствором.
Последовательность действий:
1. Катетеры для отсасывания должны быть (стерильными и находиться на специальном столике в растворе антисептика (обычно в растворе фурацилина). Каждый сеанс отсасывания должен производиться отдельным катетером. После использования катетер следует промыть, подвергнуть антисептической обработке и стерилизации.
2. Во время аспирации катетер (при закупорке его густой слизью, корками и пр.) должен промываться с помощью отсоса только раствором антисептика, для этого обычно используется раствор фурацилина, налитый в отдельный сосуд.
3. После каждого отсасывания целесообразно закапывать в трахеостому 1-2 мл антисептика (раствор фурацилина и др)
4. В ближайшие 2-3 дня после наложения трахеостомы должна проводиться общая профилактическая антибиотикотерапия (назначаются макролиды, полусинтетические пенициллины и др.)
5. Строго соблюдение методика проведения аспирации:
· Наружный диаметр отсасывающего катетера должен быть меньше половины диаметра трахеостомической трубки
· Катетер должна быть полужесткими, так как жесткий катетер травмирует слизистую, а мягкий не позволяет осуществить его введение в нижележащие части трахеи и в бронхи, легко слипается во время аспирации
· Длительность одномоментного отсасывания не должна превышать 5 секунд, интервалы между отдельными отсасываниями должно быть не менее 5 секунд
· До и после отсасывания целесообразно обеспечить больному дыхания воздухом, обогащенным кислородом
· Аспирирующий катетер должен вводиться при неработающем отсосе, или с применением специального тройника, одно из отверстий которого в момент катетера открывается, что исключает появления отрицательного давления в катетере, и тем самым, присасывание его конца к стенке трахеи и бронхов, присасывание слизи и смешение ее при продвижении катетера в нижележащие отделы трахеобронхиального дерева, иными словами, нельзя отсасывать мокроту во время введения катетера
· Отсос должен включаться лишь в период аспирации и при извлечении катетера из трахеостомы
· Катетер следует вводить и извлекать из трахеи медленно и осторожно (атравматично)- во времяаспираций необходимо исключить присасывание катетера к слизистой трахеи и брохов, так как это повреждает слизистую оболочку, что увеличивает риск инфекционных осложнений и вызывает развитие рубцов, наименьшая травматичность обеспечивается применением катетеров с боковым расположением отвертсвия и со слепым конусообразным изогнутым концом (катетеры «Тимана»и др)
6. В первые 2 часа после наложения трахеостомы аспирацию из трахеи и бронхов следует проыодить через каждые 20-30 минут, в последующем- через 1-2 часа и реже (но необходтмости).
7. Перед каждым отсасыванием из трахеостомы следует в течение примерно 5 минут проводить перкуссионный и вибрационный массаж трудной клетки, что облегчает удаление мокроты. С этой же целью перед отсасывании в трахеостому можно ввести 10-15 мл изотонического раствора натрия хлорида.
8. При отсасывании из бронхов необходимо использовать эффекты постурального дренажа и приемы, позволяющие вводить катетер поочередно в левый и правый главные бронхи (при введении в левый бронх- поворот головы больного и смещение его трахеи вправо, при введении и правый главный бронх- поворот головы и смещение трахеи влево); во время постурального дренажа следует проводить перкуссионный, вибрационный и иной массаж грудной клетки.
9. Для профилактики инфекционных осложнений следует так же санировать пространство над манжетой, что позволяет проводить трахеостомическая трубка с каналом для аспирации
ОБРАБОТКА ТРАХЕОСТОМЫ
Цель: поддержание нормального дыхания через трахеостому, санация трахеобронхиального дерева
Показания: наличие трахеостомы
Оснащение : стерильные: маска, стерильные перчатки, катетеры, марлевые салфетки, ватные тампоны, зонд с нарезкой, внутренняя трахеостомическая трубка, пипетка соответствующего размера, лоток, пинцет, 0,82%-ный раствор фурацилина, 70%-ный спирт, 2%-ный раствор гидрокарбоната натрия (пищевая сода) паста Лассара, теплая кипяченая вода, электроотсос, лоток для отработанного материала, емкость с дезинфицирующим раствором.
Последовательность действия:
1. Вымыть руки, надеть перчатки, маску
2. Усадить пациента, снять грязную повязку, положить ее в лоток для отработанного материала
3. На зонд с нарезкой намотать вату, смочить ее теплой водой
4. Удалить внутреннюю трубку, протереть ее внутреннюю поверхность ватой на зонде и поместить ее в лоток для отработанного материала
5. Встать сбоку от больного
6. Закапать внутрь наружной трубки теплый стерильный содовый раствор
7. Пипетку поместить в лоток для отработанного материала
8. Ввести катетер в трубку на глубину 10-15см, включить электроотсос и удалить содержимое трахеи, медленно извлекая катетер в течение 15-25 секунд
9. Процедуру повторить 2-3 раза
10. Обработать кожу вокруг стомы фурацилином, осущить салфеткой, наложить пасту Лассара на кожу, под трахеостомическую трубку подвести марлевые салфетки штанишки)
11. Ввести внутреннюю трубку
12. Прикрыть трахеостому влажной двухслойной салфеткой, смоченной 0,02%-ным раствором фурацилина, укрепленной на шее по типу фартук)
13. Фиксирующий бинт провести через левое ушко наружной трахеостомической трубки
14. Провести двойной слой бинта по задней поверхности шеи, ввести бинт в правое ушко наружной трахеостомической трубки, связать концы бинта не шее справа.
15. Провести дезинфекцию предметов ухода
16. Снять перчатки, погрузить в емкость с дезинфицирующим средством, вымыть руки.
9.МАНИПУЛЯЦИЯ «ВВЕДЕНИЕ ВОЗДУХОВОДА»
Введение воздуховода через рот
1. Показания:
a. Полная или частичная обструкция верхних дыхательных путей. b. Сжатые челюсти у больных в бессознательном состоянии или у интубированных пациентов.
c. Необходимость аспирации из ротоглотки.
2. Противопоказания:
a. Переломы челюстей или зубов.
b. Наличие в анамнезе или острый эпизод бронхоспазма.
3. Анестезия: Местное орошение 10% раствором лидокаина для угнетения рвотного рефлекса.
4. Оборудование:
a. Пластмассовый или снабженный мягкой кромкой воздуховод.
b. Шпатель.
c. Электроотсос.
5. Положение: Лежа на спине или на боку
6. Техника:
a. Откройте рот, надавите шпателем на основание языка, выведите язык вперед из глотки.
b. Введите воздуховод в рот вогнутой стороной к подбородку так, чтобы дистальный конец его направлялся, но не достигал задней стенки ротоглотки; фланец воздуховода должен на 1-2 см высовываться из-за резцов.
c. Примените прием выведения нижней челюсти, обеспечивающий подъем языка от стенки глотки.
d. Нажмите на воздуховод и продвиньте его на 2 см в рот так, чтобы его изгиб лег на основание языка. e. Как вариант, воздуховод можно ввести вогнутой стороной к нёбу. После того, как его конец достигнет язычка (в этом случае шпатель не используют); поверните воздуховод на 180° и далее продвиньте по языку. Этот метод не рекомендуется, если у пациента есть шатающиеся зубы или травма полости рта, так как поворот воздуховода может вызвать смещение зубов или усиление кровотечения.
7. Осложнения и их устранение:
a. Развитие бронхоспастической реакции Поддерживайте проходимость дыхательных путей приемом, описанным в разделе А.
b. Тошнота или рвота Поверните голову на бок и проведите аспирацию.
c. Усугубление обструкции дыхательных путей из-за неправильного расположения воздуховода Удалите воздуховод и введите его снова, если в этом будет необходимость.
Введение воздуховода через нос
1. Показания:
a. Обструкция верхних дыхательных путей у пациентов с сохраненным сознанием.
b. Травма зубов или ротоглотки.
c. Неадекватное раскрытие дыхательных путей после введения ротового воздуховода.
2. Противопоказания:
а. Окклюзия полости носа.
b. Переломы носа и основания черепа.
c. Искривление перегородки носа.
d. Коагулопатия.
e. Истечение спинномозговой жидкости из носа.
f. Транссфеноидальная гипофизэктомия в анамнезе. g. Формирование заднего фарингеального лоскута для закрытия краниолицевого дефекта в анамнезе.
3. Анестезия:
a. Визуально оцените степень проходимости ноздрей (относительный размер, наличие кровотечения или полипов) или проведите следующий тест. Необходимо, чтобы пациент выдыхал через нос на небольшое зеркальце или на клинок ларингоскопа. Больший размер пятна конденсации указывает на более проходимую ноздрю.
b. Для обеспечения местной анестезии и вазоконстрикции в носовых путях используйте смесь следующего состава: 10 мг фенилэфрина в 10 мл 2% геля лидокаина.
c. Введите тампон на стержне в выбранную ноздрю и дождитесь наступления местной анестезии.
d. Осторожно последовательно вводите тампоны на стержне глубже в ноздрю, пока три тампона не будут находиться одновременно на уровне задней стенки носа, не причиняя значительных неудобств больному. e. После использования данной методики тампонирования обычно удается провести через полость носа 7.5 мм воздуховод. f. При невозможности использования тампонов, лидокаин-фенилэфриновая смесь может быть введена шприцем непосредственно в полость носа.
4. Оборудование:
a. Ватные тампоны на стержне.
b. Носовые воздуховоды разных калибров (обычно от 6.0 до 8.0 мм)
c. 2% гель лидокаина. d. Фенилэфрин. e. Электроотсос. 5. Положение: Лежа на спине, на боку, сидя.
6. Техника:
a. Осторожно введите воздуховод в нос вогнутой стороной к твердому нёбу. b. Проводите воздуховод в нос под нижнюю раковину, параллельно нёбу.
c. Если встречается сопротивление в заднем зеве, осторожно поверните воздуховод на 60-90° и продолжайте вводить в зев; может помочь также поворот воздуховода на 90° против часовой стрелки с последующим возвращением его в исходное положение после прохода через зев.
d. Если при среднем усилии воздуховод не проходит, используйте таковой на калибр меньше.
e. Если воздуховод не продвигается, извлеките его на 2 см, пропустите через него небольшой катетер для аспирации, затем попытайтесь ввести воздуховод, используя катетер в качестве проводника.
